Возможность дифференциальной диагностики очаговых образований поджелудочной железы путем анализа микроРНК
https://doi.org/10.37748/2686-9039-2023-4-3-3
Аннотация
Цель исследования. Поиск потенциально маркерных молекул микроРНК в материале узловых образований поджелудочной железы.
Материалы и методы. В исследование были включены образцы ткани очаговых образований поджелудочной железы с гистологическим заключением: хронический панкреатит (n = 23), интраэпителиальная неоплазия low grade /PanIN‑1/2 (n = 19) и high grade степени /PanIN‑3 (n = 8), инвазивная протоковая карцинома (n = 26). В рамках работы был проведен широкий профайлинг пулов образцов разных гистологических типов, выбор потенциально маркерных микроРНК, анализ экспрессии выбранных молекул микроРНК во всех образцах, включенных в исследование, поиск статистически значимых различий между группами образцов, апробация нового алгоритма интерпретации полученных результатов путем вычисления соотношений концентраций «реципрокных пар» микроРНК. Метод анализа: обратная транскрипция с последующей количественной ПЦР в режиме реального времени.
Результаты. Уровень экспрессии молекул miR‑216a и miR‑217 снижается в ряду: PanIN‑1/2 > PanIN‑3 > протоковая карцинома ПЖ. Также в клетках инвазивной протоковой карциномы поджелудочной железы повышена экспрессия miR‑375 и снижена экспрессия miR‑143. Высокая точность дифференциальной диагностики (AUC > 0,95) очагов хронического панкреатита и инвазивной протоковой карциномы ПЖ может быть обеспечена с помощью панели из четырех молекул miR‑216a, miR‑217, miR‑1246 и let‑7a.
Заключение. Оценка экспрессии молекул микроРНК в материале очаговых образований ПЖ с целью дифференциальной диагностики протоковой карциномы имеет диагностический потенциал, но метод требует валидации с использованием большей коллекции биологических образцов.
Ключевые слова
Об авторах
М. С. КнязеваКнязева Маргарита Сергеевна – младший научный сотрудник лаборатории субклеточных технологий
AuthorID: 1170597, Scopus Author ID: 57201116352
г. Санкт-Петербург
Т. М. Шестопалова
Шестопалова Татьяна Михайловна – врач-патологоанатом, врач клинической лабораторной диагностики
AuthorID: 1183632
г. Санкт-Петербург
Л. М. Забегина
Забегина Лидия Михайловна – младший научный сотрудник лаборатории субклеточных технологий
AuthorID: 1108887, Scopus Author ID: 57218621246
г. Санкт-Петербург
А. В. Шалаев
Шалаев Андрей Владимирович – младший научный сотрудник лаборатории субклеточных технологий
AuthorID: 1165260, Scopus Author ID: 57211294093
г. Санкт-Петербург
А. К. Ратникова
Ратникова Анна Константиновна – к.м.н., врач-кардиолог высшей категории, младший научный сотрудник
AuthorID: 1076748
г. Санкт-Петербург
В. А. Кащенко
Кащенко Виктор Анатольевич – д.м.н., профессор, заместитель генерального директора по научно-образовательной работе
AuthorID: 340730, ResearcherID: K-8778-2015, Scopus Author ID: 7003374162
г. Санкт-Петербург
С. Л. Воробьев
Воробьев Сергей Леонидович – к.м.н., директор, врач-патологоанатом
AuthorID: 934523
г. Санкт-Петербург
А. В. Малек
Россия
Малек Анастасия Валерьевна – д.м.н., заведующая лаборатории субклеточных технологий
ResearcherID: R-8804-2016, Scopus Author ID: 35741075000
г. Санкт-Петербург
Список литературы
1. Злокачественные новообразования в России в 2020 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А. Д. Каприна, В. В. Старинского, А. О. Шахзадовой. М.: МНИОИ им. П. А. Герцена − филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 2021, 252 с. Доступно по: https://oncology-association.ru/wp-content/uploads/2021/11/ zis-2020-elektronnaya-versiya.pdf, Дата обращения: 20.06.2023.
2. Мерабишвили М. В. Выживаемость онкологических больных. Выпуск второй. Выпуск 2, ч.1; Санкт-Петербург, 2011, 329 с.
3. Каприн А. Д. Клинические рекомендации. Рак поджелудочной железы. Научный совет Министерства Здравоохранения Российской Федерации, 2019, 67 с. Доступно по: https://oncology-association.ru/wp-content/ uploads/2020/09/rak_podzheludochnoj_zhelezy.pdf, Дата обращения: 20.06.2023.
4. Yang J, Xu R, Wang C, Qiu J, Ren B, You L. Early screening and diagnosis strategies of pancreatic cancer: a comprehensive review. Cancer Commun (Lond). 2021 Dec;41(12):1257–1274. https://doi.org/10.1002/cac2.12204
5. Sharma A, Kandlakunta H, Nagpal SJS, Feng Z, Hoos W, Petersen GM, et al. Model to Determine Risk of Pancreatic Cancer in Patients With New-Onset Diabetes. Gastroenterology. 2018 Sep;155(3):730–739.e3. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2018.05.023
6. Madhavan B, Yue S, Galli U, Rana S, Gross W, Müller M, et al. Combined evaluation of a panel of protein and miRNA serum-exosome biomarkers for pancreatic cancer diagnosis increases sensitivity and specificity. Int J Cancer. 2015 Jun 1;136(11):2616–2627. https://doi.org/10.1002/ijc.29324
7. Michálková L, Horník Š, Sýkora J, Habartová L, Setnička V. Diagnosis of pancreatic cancer via1H NMR metabolomics of human plasma. Analyst. 2018 Dec 3;143(24):5974–5978. https://doi.org/10.1039/c8an01310a
8. Bunganič B, Laclav M, Dvořáková T, Bradáč O, Traboulsi E, Suchánek Š, et al. Accuracy of EUS and CEH EUS for the diagnosis of pancreatic tumours. Scand J Gastroenterol. 2018;53(10–11):1411–1417. https://doi.org/10.1080/00365521.2018.1524023
9. Facciorusso A, Martina M, Buccino RV, Nacchiero MC, Muscatiello N. Diagnostic accuracy of fine-needle aspiration of solid pancreatic lesions guided by endoscopic ultrasound elastography. Ann Gastroenterol. 2018;31(4):513–518. https://doi.org/10.20524/aog.2018.0271
10. Михетько А. А., Артемьева А. С., Ивко О. В., Ткаченко О. Б., Гринкевич М. В., Сидорова А. Н. и др. Эндоскопическая эндосонография с тонкоигольной аспирационной биопсией в диагностике опухолей поджелудочной железы. Вопросы онкологии. 2021;67(3):397–404. https://doi.org/10.37469/0507-3758-2021-67-3-397-404
11. Daoud, A.Z.; Mulholland, E.J.; Cole, G.; McCarthy, H.O. MicroRNAs in Pancreatic Cancer: biomarkers, prognostic, and therapeutic modulators. BMC Cancer 2019, 19, 1130. https://doi.org/10.1186/s12885-019-6284-y.
12. Ariston Gabriel AN, Wang F, Jiao Q, Yvette U, Yang X, Al-Ameri SA, et al. The involvement of exosomes in the diagnosis and treatment of pancreatic cancer. Mol Cancer. 2020 Aug 27;19(1):132. https://doi.org/10.1186/s12943-020-01245-y
13. Fathi M, Ghafouri-Fard S, Abak A, Taheri M. Emerging roles of miRNAs in the development of pancreatic cancer. Biomed Pharmacother. 2021 Sep;141:111914. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2021.111914
14. O’Neill RS, Stoita A. Biomarkers in the diagnosis of pancreatic cancer: Are we closer to finding the golden ticket? World J Gastroenterol. 2021 Jul 14;27(26):4045–4087. https://doi.org/10.3748/wjg.v27.i26.4045
15. Sohrabi E, Rezaie E, Heiat M, Sefidi-Heris Y. An Integrated Data Analysis of mRNA, miRNA and Signaling Pathways in Pancreatic Cancer. Biochem Genet. 2021 Oct;59(5):1326–1358. https://doi.org/10.1007/s10528-021-10062-x
16. Androvic P, Valihrach L, Elling J, Sjoback R, Kubista M. Two-tailed RT-qPCR: a novel method for highly accurate miRNA quantification. Nucleic Acids Res. 2017 Sep 6;45(15):e144. https://doi.org/10.1093/nar/gkx588
17. Andersen CL, Jensen JL, Ørntoft TF. Normalization of real-time quantitative reverse transcription-PCR data: a model-based variance estimation approach to identify genes suited for normalization, applied to bladder and colon cancer data sets. Cancer Res. 2004 Aug 1;64(15):5245–5250. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-04-0496
18. Keller A, Gröger L, Tschernig T, Solomon J, Laham O, Schaum N, et al. miRNATissueAtlas2: an update to the human miRNA tissue atlas. Nucleic Acids Res. 2022 Jan 7;50(D1):D211–D221. https://doi.org/10.1093/nar/gkab808
19. Yonemori K, Kurahara H, Maemura K, Natsugoe S. MicroRNA in pancreatic cancer. J Hum Genet. 2017 Jan;62(1):33–40. https://doi.org/10.1038/jhg.2016.59
20. Hasegawa S, Eguchi H, Nagano H, Konno M, Tomimaru Y, Wada H, et al. MicroRNA-1246 expression associated with CCNG2-mediated chemoresistance and stemness in pancreatic cancer. Br J Cancer. 2014 Oct 14;111(8):1572–1580. https://doi.org/10.1038/bjc.2014.454
21. Ta N, Huang X, Zheng K, Zhang Y, Gao Y, Deng L, et al. miRNA-1290 Promotes Aggressiveness in Pancreatic Ductal Adenocarcinoma by Targeting IKK1. Cell Physiol Biochem. 2018;51(2):711–728. https://doi.org/10.1159/000495328
22. Szafranska AE, Davison TS, John J, Cannon T, Sipos B, Maghnouj A, et al. MicroRNA expression alterations are linked to tumorigenesis and non-neoplastic processes in pancreatic ductal adenocarcinoma. Oncogene. 2007 Jun 28;26(30):4442– 4452. https://doi.org/10.1038/sj.onc.1210228
23. Hong TH, Park IY. MicroRNA expression profiling of diagnostic needle aspirates from surgical pancreatic cancer specimens. Ann Surg Treat Res. 2014 Dec;87(6):290–297. https://doi.org/10.4174/astr.2014.87.6.290
24. Korobkina EA, Knyazeva MS, Kil YV, Titov SE, Malek AV. Comparative analysis of RT-qPCR based methodologies for microRNA detection. Klin Lab Diagn. 2018;63(11):722–728. https://doi.org/10.18821/0869-2084-2018-63-11-722-728
25. Marabita F, de Candia P, Torri A, Tegnér J, Abrignani S, Rossi RL. Normalization of circulating microRNA expression data obtained by quantitative real-time RT-PCR. Brief Bioinform. 2016 Mar;17(2):204–212. https://doi.org/10.1093/bib/bbv056
26. Knyazeva M, Korobkina E, Karizky A, Sorokin M, Buzdin A, Vorobyev S, et al. Reciprocal Dysregulation of MiR-146b and MiR451 Contributes in Malignant Phenotype of Follicular Thyroid Tumor. Int J Mol Sci. 2020 Aug 19;21(17):5950. https://doi.org/10.3390/ijms21175950
27. Xie F, Li C, Zhang X, Peng W, Wen T. MiR-143-3p suppresses tumorigenesis in pancreatic ductal adenocarcinoma by targeting KRAS. Biomed Pharmacother. 2019 Nov;119:109424. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2019.109424
28. Hu Y, Ou Y, Wu K, Chen Y, Sun W. MiR-143 inhibits the metastasis of pancreatic cancer and an associated signaling pathway. Tumour Biol. 2012 Dec;33(6):1863–1870. https://doi.org/10.1007/s13277-012-0446-8
29. Wei J, Yang L, Wu YN, Xu J. Serum miR-1290 and miR-1246 as Potential Diagnostic Biomarkers of Human Pancreatic Cancer. J Cancer. 2020;11(6):1325–1333. https://doi.org/10.7150/jca.38048
30. Xu YF, Hannafon BN, Khatri U, Gin A, Ding WQ. The origin of exosomal miR-1246 in human cancer cells. RNA Biol. 2019 Jun;16(6):770–784. https://doi.org/10.1080/15476286.2019.1585738
31. Князева М. С., Забегина Л. М., Конева О. М., Лютынский В. В., Смирнова О. А., Жамойдик В. И. и др. Оценка степени тажести цервикальной дисплазии путем анализа микроРНК в материале цервикального мазка. Онкогинекология. 2022;(3(43)):57–68. https://doi.org/10.52313/22278710_2022_3_57, EDN: NCDHZF
Дополнительные файлы
Рецензия
Для цитирования:
Князева М.С., Шестопалова Т.М., Забегина Л.М., Шалаев А.В., Ратникова А.К., Кащенко В.А., Воробьев С.Л., Малек А.В. Возможность дифференциальной диагностики очаговых образований поджелудочной железы путем анализа микроРНК. Южно-Российский онкологический журнал/ South Russian Journal of Cancer. 2023;4(3):20-35. https://doi.org/10.37748/2686-9039-2023-4-3-3
For citation:
Kniazeva M.S., Shestopalova T.M., Zabegina L.M., Shalaev A.V., Ratnikova A.K., Kashchenko V.A., Vorobyev S.L., Malek A.V. Prospects of differential diagnosis of focal lesion of pancreas by the microRNA assessment. South Russian Journal of Cancer. 2023;4(3):20-35. https://doi.org/10.37748/2686-9039-2023-4-3-3