Культивирование клеток в альгинатных каплях, как высокопроизводительный метод получения клеточных сфероидов для биопечати
https://doi.org/10.37748/2686-9039-2023-4-2-5
Аннотация
Цель исследования. Тестирование протокола получения клеточных сфероидов культур рака молочной железы (РМЖ) для биопечати путём наращивания в альгинатных каплях.
Материалы и методы. Клетки культур BT-20 и MDA-MB-453 культивировали в среде DMEM с добавлением 10 % FBS. Далее клетки снимали с пластика при помощи раствора трипсин- Версена и ресуспендировали в стерильном 2 % растворе альгината, приготовленном на DPBS, до концентрации 105 кл/мл. Раствор альгината с клетками исследуемых культур РМЖ медленно капали через иглу 30G в стерильный охлажденный раствор хлорида кальция (100 мМ) с высоты 10 см. После полимеризации альгинатные капли отмывали в среде DMEM и культивировали в течение двух недель в среде DMEM с добавлением 10 % FBS при 37 °C и 5,0 % СО2. Образующиеся в альгинате сфероиды фотографировали на 3-, 7-, 10- и 14-е сутки культивирования, после чего их извлекали из альгината путём выдерживания в 55мМ растворе цитрата натрия с добавлением 20мМ этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА) и заключали в парафиновые блоки по стандартной методике с последующим гистологическим исследованием.
Результаты. Клеточные сфероиды- клоны образовывались в обеих культурах уже на 3 сутки культивирования. С 3 по 10-е сутки в обеих культурах наблюдался равномерный рост клеточных сфероидов с постепенным замедлением увеличения размеров сфероидов к 14-му дню культивирования. Доля клеток, образовавших клоны (размером более 500 мкм2), на 10-е сутки составила 25,2 % ± 7,1 % (n = 25) в культуре BT-20 и 38,5 % ± 9,9 % (n = 25) в культуре MDA-MB-453. На 14-е сутки для ВТ-20 были характерны сфероиды, мало варьирующие по размеру и форме, средней площадью 1652 ± 175 мкм2, обладающие плотной структурой с ровными краями. Сфероиды из клеток культуры MDA-MB-453 оказались более рыхлыми и легко деформирующимися, их размеры и форма заметно варьировали, средняя площадь сфероидов составила 2785 ± 345 мкм2.
Заключение. Получение сфероидов в альгинатных каплях уступает по скорости методам формирования клеточных конгломератов в висячих каплях или на микроячейках, однако превосходит эти методы по производительности, которая сравнима с получением сфероидов на низкоадгезивных подложках путём постоянного перемешивания среды. Кроме того, клональная природа получаемых сфероидов приводит к увеличению трат на проведение исследований и ограничивает, тем самым, их масштабируемость.
Об авторах
С. Ю. ФилипповаРоссия
Филиппова Светлана Юрьевна – научный сотрудник лаборатории клеточных технологий
AuthorID: 791081, ResearcherID: AAH-4408-2020, Scopus Author ID: 57189618843
г. Ростов-на-Дону
Т. В. Чембарова
Чембарова Татьяна Владимировна – младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий
AuthorID: 1051985 ResearcherID: AAR-3198-2021 Scopus Author ID: 57221303597
344037, г. Ростов-на- Дону, ул. 14-я линия, д. 63
С. В. Тимофеева
Тимофеева Софья Владимировна – научный сотрудник лаборатории клеточных технологий
AuthorID: 1064599, ResearcherID: AAH-4834-2020, Scopus Author ID: 57243356500
г. Ростов-на-Дону
И. В. Межевова
Межевова Ирина Валентиновна – младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий
AuthorID: 1011695, ResearcherID: AAI-1860-2019, Scopus Author ID: 57296602900
г. Ростов-на-Дону
Н. В. Гненная
Гненная Надежда Владимировна – младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий
AuthorID: 900758, ResearcherID: V-5582-2018, Scopus Author ID: 57214806863
г. Ростов-на-Дону
И. А. Новикова
Новикова Инна Арнольдовна – кандидат медицинских наук, заместитель генерального директора по науке
AuthorID: 726229, ResearcherID: E-7710-2018, Scopus Author ID: 57202252773
г. Ростов-на-Дону
Т. О. Лаптева
Лаптева Татьяна Олеговна – заведующая патологоанатомическим отделением
AuthorID: 849370
г. Ростов-на-Дону
Список литературы
1. Афонин Г. В., Рагулин Ю. А., Гулидов И. А. Ускоренные режимы адъювантной лучевой терапии в лечении рака молочной железы. Исследования и практика в медицине. 2017;4(3):66–74. https://doi.org/10.17709/2409-2231-2017-4-3-6, EDN: ZGIHQH
2. Балыкова Л. А., Инчина В. И., Тарасова Т. В., Мосина Л. М., Гвоздикова Е. Н., Хайдар Д. А. и др. Эффективность липосомального доксорубицина гидрохлорида в комбинации с циклофосфаном в лечении рака молочной железы в эксперименте. Исследования и практика в медицине. 2021;8(4):23–32. https://doi.org/10.17709/2410-1893-2021-8-4-2, EDN: ALOTUB
3. Ройтберг Г. Е., Дорош Ж. В., Аникеева О. Ю. Лечение трижды негативного рака молочный железы у пациентки с метаболическим синдромом. Исследования и практика в медицине. 2021;8(1):62–68. https://doi.org/10.17709/2409-2231-2021-8-1-6, EDN: HKVAWJ
4. Зубарева Е. Ю., Сеньчукова М. А., Вирич Е. В., Зубарев М. Р., Гончарова М. А. Уровни HIF-1α и TGF-β1 в сыворотке крови в зависимости от клинико-морфологических характеристик и чувствительности рака молочной железы к неоадъювантной химиотерапии. Исследования и практика в медицине. 2021;8(4):53–64. https://doi.org/10.17709/2410-1893-2021-8-4-5, EDN: GLUUQD
5. Злокачественные новообразования в России в 2020 году (заболеваемость и смертность). Под ред. А. Д. Каприна, В. В. Старинского, А. О. Шахзадовой. М.: МНИОИ им. П. А. Герцена – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России. 2021, 252 с. Доступно по: https://oncology-association.ru/wp-content/uploads/2021/11/zis-2020elektronnaya-versiya.pdf, Дата обращения: 29.12.2022.
6. Галимова Э. С., Галагудза М. М. Двухмерные и трехмерные модели культур клеток опухолей in vitro: преимущества и недостатки. Бюллетень сибирской медицины. 2018;17(3):188–196. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2018-3-188-196, EDN: VJUHHB
7. Кит О. И., Шатова Ю. С., Новикова И. А., Владимирова Л. Ю., Ульянова Е. П., Комова Е. А. и др. Экспрессия Р53 и BCL2 при различных подтипах рака молочной железы. Фундаментальные исследования. 2014;(10-1):85–88. EDN: SMJMCL
8. Тимофеева С. В., Шамова Т. В., Ситковская А. О. 3D-биопринтинг микроокружения опухоли: последние достижения. Журнал общей биологии. 2021;82(5):389–400. https://doi.org/10.31857/S0044459621050067, EDN: GMEORZ
9. Jubelin C, Muñoz-Garcia J, Griscom L, Cochonneau D, Ollivier E, Heymann MF, et al. Three-dimensional in vitro culture models in oncology research. Cell Biosci. 2022 Sep 11;12(1):155. https://doi.org/10.1186/s13578-022-00887-3
10. Zhuang P, Chiang YH, Fernanda MS, He M. Using Spheroids as Building Blocks Towards 3D Bioprinting of Tumor Microenvironment. Int J Bioprint. 2021;7(4):444. https://doi.org/10.18063/ijb.v7i4.444
11. Hamburger AW, Salmon SE. Primary bioassay of human tumor stem cells. Science. 1977 Jul 29;197(4302):461–463. https://doi.org/10.1126/science.560061
12. Филиппова С. Ю., Ситковская А. О., Бондаренко Е. С., Новикова И. А., Харагезов Д. А., Позднякова В. В. и др. Опыт применения инкапсуляции в альгинат для исследования влияния EGF и FGF2 на пролиферацию клеток колоректального рака в условиях пониженной адгезии in vitro. Цитология. 2021;63(2):184–192. https://doi.org/10.31857/S0041377121020024, EDN: QMRKCI
13. Johnson PA, Menegatti S, Chambers AC, Alibhai D, Collard TJ, Williams AC, et al. A rapid high throughput bioprinted colorectal cancer spheroid platform forin vitrodrug- and radiation-response. Biofabrication. 2022 Nov 2;15(1). https://doi.org/10.1088/1758-5090/ac999f
14. Филиппова С. Ю., Ситковская А. О., Тимофеева С. В., Чембарова Т. В., Межевова И. В., Гненная Н. В. и др. Опыт получения многокомпонентной трёхмерной клеточной модели опухолевого роста для молекулярно-генетических исследований рака молочной железы. Научное электронное периодическое издание ЮФУ «Живые и биокосные системы». 2022;(42). https://doi.org/10.18522/2308-9709-2022-42-9, EDN: WMULYR
15. Aggarwal V, Miranda O, Johnston PA, Sant S. Three dimensional engineered models to study hypoxia biology in breast cancer. Cancer Lett. 2020 Oct 10;490:124–142. https://doi.org/10.1016/j.canlet.2020.05.030
16. Hompland T, Fjeldbo CS, Lyng H. Tumor Hypoxia as a Barrier in Cancer Therapy: Why Levels Matter. Cancers (Basel). 2021 Jan 28;13(3):499. https://doi.org/10.3390/cancers13030499
Дополнительные файлы
Рецензия
Для цитирования:
Филиппова С.Ю., Чембарова Т.В., Тимофеева С.В., Межевова И.В., Гненная Н.В., Новикова И.А., Лаптева Т.О. Культивирование клеток в альгинатных каплях, как высокопроизводительный метод получения клеточных сфероидов для биопечати. Южно-Российский онкологический журнал/ South Russian Journal of Cancer. 2023;4(2):47-55. https://doi.org/10.37748/2686-9039-2023-4-2-5
For citation:
Filippova S.Yu., Chembarova T.V., Timofeeva S.V., Mezhevova I.V., Gnennaya N.V., Novikova I.A., Lapteva T.O. Cultivation of cells in alginate drops as a high-performance method of obtaining cell spheroids for bioprinting. South Russian Journal of Cancer. 2023;4(2):47-55. https://doi.org/10.37748/2686-9039-2023-4-2-5