Preview

Южно-Российский онкологический журнал/ South Russian Journal of Cancer

Расширенный поиск

О РАСШИРЕНИИ ВАРИАНТОВ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ МЫШЕЙ BALB/C NUDE ДЛЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ИЗУЧЕНИЯ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ ОПУХОЛЕЙ ЧЕЛОВЕКА IN VIVO

Полный текст:

Аннотация

Статья имеет проблемный, постановочный характер. На современном этапе помимо объективных факторов, затрудняющих создание адекватных экспериментальных моделей человеческого онкогенеза, имеет место значительное отставание отечественной науки в разработке данного направления. Это снижает доступность для российских специалистов гуманизированных иммунодефицитных животных, соответствующих уровню исследовательских задач. В работе на основе анализа сведений литературы обсуждаются подходы, которые могут расширить варианты использования широкодоступной иммунодефицитной животной модели - мышей BALB/c nude. Рассматривается возможность использования мезенхимальных стволовых клеток человека, не отторгаемых мышами BALB/c nudе, для локальной гуманизации иммунодефицитных животных и улучшения структурно-функциональных характеристик ксенографтов. Анализируется возможность получения ксенографтов человеческих глиобластом, поддерживаемых в организме иммунокомпетентных мышей BALB/c после серийных пассажей органотипических сфероидов опухоли в головном мозге мышей BALB/c nude.

Об авторах

Галина Витальевна Жукова
ФГБУ "Ростовский научно-исследовательский онкологический институт" МЗ РФ
Россия

Доктор биологических наук старший научный сотрудник испытательного лабораторного центра (ИЛЦ) Ростовского научно-исследовательского онкологического института.

SPIN-код: 1887-7415



Алла Ивановна Шихлярова
ФГБУ «Ростовский научнго-исследовательский онкологический институт» МЗ РФ
Россия
доктор биологических наук, профессор, старший научный сотрудник ИЛЦ ФГБУ «РНИОИ» МЗ РФ.


Александр Борисович Сагакянц
ФГБУ «Ростовский научнго-исследовательский онкологический институт» МЗ РФ
Россия
кандидат биологических  наук, доцент, руководитель лаборатории иммунофенотипирования опухолей ФГБУ «РНИОИ» МЗ РФ.


Татьяна Пантелеевна Протасова
ФГБУ «Ростовский научнго-исследовательский онкологический институт» МЗ РФ
Россия
кандидат биологических наук, научный сотрудник ИЛЦ ФГБУ «РНИОИ» МЗ РФ


Список литературы

1. Williams J.A. Using PDX for Preclinical Cancer Drug Discovery: The Evolving Field. J. Clin. Med. 2018, 7(3), 41; https://doi.org/10.3390/jcm7030041

2. De La Rochere P., Guil-Luna S., Decaudin D., Azar G., Sidhu S.S., Piaggio E. Humanized Mice for the Study of Immuno-Oncology. Trends in Immunology, 2018; 39(9): 748-63. https://doi.org/10.1016/j.it.2018.07.00

3. Wege A.K. Humanized Mouse Models for the Preclinical Assessment of Cancer Immunotherapy. BioDrugs 2018; 32(3): 245-266. http://dx.doi.org/10.1007/s40259-018-0275-4 /

4. Huszthy P.C., Daphu I., Niclou S.P. Stieber D., Nigro J.M., Sakariassen P.Ø., Mi-letic H., Thorsen F., Bjerkvig R. In vivo models of primary brain tumors: pitfalls and perspec-tives. Neuro Oncol. 2012; 14(8): 979–993. https://doi.org/10.1093/neuonc/nos13. 5. Morton J.J., Bird G., Refaeli Y., Jimeno A. Humanized mouse xenograft models: narrowing the tumor-microenvironment gap. Cancer Res. 2016; 76(21): 6153–6158. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-16-1 .

5. Murayama T., Gotoh N. Patient-Derived Xenograft Models of Breast Cancer and Their Application. Cells. 2019, 8(6): 621; https://doi.org/10.3390/cells8060621.

6. Bracci L., Schiavoni G., Sistigu A., Belardelli F. Immune-based mechanisms of cytotoxic chemotherapy: implications for the design of novel and rationale-based combined treatments against cancer,” Cell Death and Differentiation. 2014; 21(1): 15–25. https://doi.org/10.1038/cdd.2013.67.

7. Huszthy P.C., Sakariassen P. Ø., Espedal H., Brokstad K.A., Bjerkvig R., Miletic H. Engraftment of Human Glioblastoma Cells in Immunocompetent Rats through Acquired Im-munosuppression, PLOS ONE, 2015; 10(10): e0140303. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0136089.

8. Трещалина Е.М. Иммунодефицитные мыши Balb/c nude и моделирование различных вариантов опухолевого роста для доклинических исследований. Российский биотерапевтический журнал. 2017; 16(3): 6-13. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2017-16-3-6-13 .

9. Tsoneva D., Minev B., Frentzen A., Zhang Q., Wege A.K., SzalayA.A. Human-ized Mice with Subcutaneous Human Solid Tumors for Immune Response Analysis of Vaccinia Virus-Mediated Oncolysis. Molecular Therapy: Oncolytics. 2017; 5: 41-61. http://dx.doi.org/10.1016/j.omto.2017.03.001 .

10. Ridge S.M., Sullivan F.J., Glynn S.A. Mesenchymal stem cells: key players in cancer progression. Molecular Cancer. 2017; 16: 31. https://doi.org/10.1186/s12943-017-0597-8.

11. Wu CH-G., Zhang J-Ch., Xie Ch-Q., Parolini O., Silini A., Huang Y-Z, Bing Lian B., Zhang M., Huan Y-C., Deng L. In vivo tracking of human placenta derived mesenchymal stem cells in nude mice via 14C-TdR labeling. BMC Biotechnology. 2015; 15: 55. https://doi.org/10.1186/s12896-015-0174-4.

12. Chen P., Huang Y., Womer K.L. Effects of mesenchymal stromal cells on human myeloid dendritic cell differentiation and maturation in a humanized mouse model. Journal of Immunological Methods. 2015; 427:100–04. https://doi.org/10.1016/j.jim.2015.10.008.

13. Pacioni S, D'Alessandris QG, Giannetti S, et al. Human mesenchymal stromal cells inhibit tumor growth in orthotopic glioblastoma xenografts. Stem Cell Res Ther. 2017; 8(1):53. https://doi.org/10.1186/s13287-017-0516-3.

14. Gao T., Yu Y., Cong Q., Wang Y., Sun M., Yao L., Xu C., Jiang W. Human mes-enchymal stem cells in the tumour microenvironment promote ovarian cancer progression: the role of platelet-activating factor. BMC Cancer. 2018;18(1): 999. https://doi.org/10.1186/s12885-018-4918-0.

15. Wabitsch S., Benzing C., Krenzien F., Splith K., Haber PK., Arnold A., Nösser M., Kamali C., Hermann F., Günther C., Hirsch D., Sauer I.M., Pratschke J., Schmelzle M. Hu-man Stem Cells Promote Liver Regeneration After Partial Hepatectomy in BALB/C Nude Mice. J Surg Res. 2019; 239:191-200. https://doi.org/10.1016/j.jss.2019.02.010.

16. Soria B., Martin-Montalvo A., Aguilera Y., Mellado-Damas N., López-BeasJ., Herrera-Herrera I., López E., Barcia J.A., Alvarez-Dolado M., Hmadcha A., Capilla-González1 V. Human Mesenchymal Stem Cells Prevent Neurological Complications of Radiotherapy. Fron-tiers in Cellular Neuroscience. 2019; 13: 204. https://doi.org/10.3389/fncel.2019.00204.

17. Bajetto A, Pattarozzi A, Corsaro A, et al. Different Effects of Human Umbilical Cord Mesenchymal Stem Cells on Glioblastoma Stem Cells by Direct Cell Interaction or Via Released Soluble Factors. Front Cell Neurosci. 2017; 11: 312. https://doi.org/10.3389/fncel.2017.

18. Li J.H., Fan W.S., Wang M.M., Wang Y.H., Ren Z.G. Effects of mesenchymal stem cells on solid tumor metastasis in experimental cancer models: a systematic review and me-ta-analysis. J Transl Med. 2018; 16 (1):113. https://doi.org/10.1186/s12967-018-1484.

19. Derose Y.S., Wang G., Lin Y-C., Bernard P.S., Buys S.S., Ebbert M.T.W., Factor R., Matsen C., Milash B.A., Nelson E., Neumaye L., Randall R., Stijleman I.J., Welm B.E., Welm A.L. Tumor grafts derived from women with breast cancer authentically reflect tumor pa-thology, growth, metastasis and disease outcomes. Nature Medicine. 2011; 17(11):1514–20. https://doi.org/10.1038/nm.2454.

20. Bjerkvig R.I., Tønnesen A., Laerum O.D., Backlund E.O. Multicellular tumor spheroids from human gliomas maintained in organ culture. J Neurosurg. 1990; 72(3): 463-75. DOI: 0.3171/jns.1990.72.3.0463.

21. van de Vijver M.J., He Y.D., van't Veer L.J., Dai H., Hart A.A., Voskuil D.W., Schreiber GJ, Peterse JL, Roberts C, Marton MJ, Parrish M, Atsma D, Witteveen A, Glas A, De-lahaye L, van der Velde T, Bartelink H, Rodenhuis S, Rutgers ET, Friend SH, Bernards R. A gene-expression signature as a predictor of survival in breast cancer. N Engl J Med. 2002; 347(25): 1999-2009. https://10.1056/NEJMoa021967 .

22. Naus C.C., Aftab Q., Sin W.Ch. Common mechanisms linking connexin 43 to neural progenitor cell migration and glioma invasion. Seminars in Cell & Developmental Biology. 2016; 50: 59–66. http://dx.doi.org/10.1016/j.semcdb.2015.12.008.

23. Сепиашвили Р.И. Иммунная система мозга и спинномозговой жидкости. Аллергология и иммунология. 2013; 14(4): 241-253.


Дополнительные файлы

1. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (563KB)    
Метаданные
2. Неозаглавлен
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Скачать (2MB)    
Метаданные

Для цитирования:


Жукова Г.В., Шихлярова А.И., Сагакянц А.Б., Протасова Т.П. О РАСШИРЕНИИ ВАРИАНТОВ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ МЫШЕЙ BALB/C NUDE ДЛЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ИЗУЧЕНИЯ ЗЛОКАЧЕСТВЕННЫХ ОПУХОЛЕЙ ЧЕЛОВЕКА IN VIVO. Южно-Российский онкологический журнал/ South Russian Journal of Cancer. 2020;1(2).

Просмотров: 0


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2687-0533 (Print)
ISSN 2686-9039 (Online)